Faza przygotowania: Sprawdź pipetę Pasteura, aby upewnić się, że jest nienaruszona i że podziałka jest wyraźnie czytelna. Jeśli wymagane są sterylne warunki, należy otworzyć indywidualnie zamknięte opakowanie w czystym stole (kaptur z przepływem laminarnym), uważając, aby uniknąć bezpośredniego kontaktu dłoni z końcówką pipety. W przypadku niesterylnych pipet dezynfekcję można przeprowadzić poprzez przetarcie ich alkoholem.
Aspiracja cieczy: Włóż pipetę Pasteura pionowo do cieczy, a następnie delikatnie ściśnij gumową gruszkę lub użyj mechanicznego przyrządu do pipetowania, aby pobrać płyn. Zaleca się utrzymywanie szybkości aspiracji 1–2 ml na sekundę, aby zapobiec tworzeniu się pęcherzyków powietrza. Odczytując objętość, ustaw oczy na poziomie menisku cieczy, aby zminimalizować błędy paralaksy. W przypadku pipet z drobną podziałką co 0,1 mL operację należy wykonywać powoli i precyzyjnie.
Przenoszenie i dozowanie: Przenieść pipetę Pasteura do docelowego pojemnika i powoli dozować ciecz; możesz delikatnie dotknąć końcówką ścianki pojemnika, aby zminimalizować pozostałości płynu. Potencjalne zagrożenia obejmują: nadmierne ściskanie, które może spowodować rozpryskiwanie się cieczy (szczególnie w przypadku substancji żrących) lub niewłaściwą utylizację po użyciu, co może prowadzić do-zanieczyszczenia krzyżowego. Po zakończeniu eksperymentu jednorazowe pipety należy wyrzucić do wyznaczonych pojemników na odpady stanowiące zagrożenie biologiczne lub chemiczne i nie wolno ich ponownie używać.
Warunki przechowywania: Nieużywane pipety Pasteura należy przechowywać w suchym miejscu i chronić przed światłem. Zalecana temperatura przechowywania to 15–25 stopni; unikać narażenia na wysokie temperatury lub nadmierną wilgotność, ponieważ warunki te mogą zagrozić stabilności materiału.